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  • DNA测序
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      我公司拥有 ABI3730XL升级版 (毛细管)测序设备,主要优点:

      (1) 对于正常的模板能精确读序达800bp.
    (2) 新型碱基识别与质量评分软件,提高测序准确性.
    (3) 高灵敏度提高了测序模板DNA的浓度适应范围.

      在科研领域,时间就是成果.科研人员可以用宝贵的时间攻克更多的难关,而对一些基本的实验操作,AuGCT将为您提供最周到的服务。

      我公司将在保证工作质量的同时,竭力加快工作进度,为客户节约时间.
     
     
    1, 测序服务报价 立即订购
     
    仪器型号 读取长度 (bp) 时间(工作日) 价格(¥ / 反应)
    ABI 3730 xl 800 1-3 60
     说明:1.未纯化PCR产物须收纯化费20元/样品;2.以上时间仅适合北京客户,外地样品须考虑运输时间.
     
    2, 测序样品相关说明
     
    样品类型 注意事项
    细菌 1.通用载体或自己构建的载体,都请注明载体名称、抗生素类型以及具体测序引物.
    2.我们提供Amp,Kan及Chl三种抗生素;特殊抗性、特殊培养条件的样品,请您提供已经培养好的5ml新鲜菌液或沉淀好的菌体.
    3.如果是病毒(包括噬菌体)DNA,低拷贝质粒以及BAC DNA,请您纯化好模板直接用于测序.
    4.建议您提供穿刺菌.如果是菌液则必须是新鲜的;加甘油后冷冻保存的菌株请您复苏后再提供.
    5.样品太少会导致培养时间过长甚至出现培养细菌失败,以至延误您的实验,所以提供的菌液至少200ul以上.
    6.务必注明是否有特殊结构: GC rich;GC cluster、Poly(A)、Poly(T)、重复序列及引物同源序列等.
    质粒 1.为确保测序的成功率和质量,建议您尽量提供菌种测序.
    2.因特殊原因只能提供质粒模板测序时,必须保证质粒是高纯度的,而且须溶解在灭菌的去离子水中而不是TE中.浓度大于100ng/ul,体积10ul以上,注明抽提方法.
    3.如果是病毒(包括噬菌体)DNA,低拷贝质粒以及BAC DNA,请纯化好模板直接用于测序.
    4.插入片段有特殊结构时必须注明,特别是含有通用引物的同源序列.
    5. 务必注明是否有特殊结构: GC rich;GC cluster、Poly(A)、Poly(T)、重复序列及引物同源序列等.
    PCR产物 1.原则上收取高质量的PCR原液, 片段大小为200~1500bp。
    2.取3ul原液电泳检测,为明亮单一条带。
    3.提供未纯化产物测序,PCR原液不少于50ul;须注明产物的体积、片段大小、浓度,是否经过Agarose胶纯化。
    4.提供已纯化的产物测序,体积不少于15ul,PCR产物须溶解在灭菌的去离子水中而不是TE中;注明提供PCR产物的体积、片段大小、浓度,是否经过Agarose胶纯化。
    5.提供的测序引物,浓度不低于5pmol/ul(5umol/L),要求PAGE纯化,体积15ul以上,样品多将适当增加量。
    6. 务必注明是否有特殊结构:GC rich;GC cluster、Poly(A)、Poly(T)、重复序列及引物同源序列等。
    备注 1.奥科生物为您提供的免费通用测序引物信息请见附件二。
    2.随机引物(RAPD)、含简并碱基或长度小于15的引物不适合用于测序。
     
    3, 测序报告说明
      1.提供报告的形式:
    -- 结果出来的第一时间我们将用email 将序列发到您的信箱,随后送出测序报告。测序报告包括彩色图谱一份和相应序列文本。
    -- 对于15个以下的测序,在提供书面报告的同时会提供一张软盘,里面包括Chromes软件、序列和图谱文件。
    -- 大量测序的报告将采用光盘的形式提供结果,并附上一些最常用的序列分析软件。
    2.查看测序报告方法:
    -- 先阅Chromes软件及其补丁使用方法文档。
    -- 运行Chromes补丁等程序(否则软件60天试用期过后,将只能打开图谱,而不能进行其他任何操作).
    3.特殊情况的说明:
    -- 下列特殊情况下只发E-mail不提供测序报告(不收费):
    -- 应信号极弱甚至没有反应信号。
    -- 信号极其杂乱,无法得到有用信息。
    -- 由于DNA结构上的原因,有时会出现反应中途无法进行之情况。如:GC rich;G、C cluster;Poly(A)、Poly(T)的连续结构等。此外,另一种情况为反应中途出现套峰现象。此种情况一般为由于DNA结构中的重复序列,造成测序用引物和模板之间有二个以上的结合点。以上为由于DNA结构原因造成了无法正常进行DNA测序,对这种情况我们须按照正常反应收费。出现以上情况后我们提倡从另一个方向进行测序。
    -- 如DNA本身或引物等的原因,测序反应从开始就无法进行,此时按反应失败计算。反应失败保证做第二次。如第二次同样情况失败。按标准收费的半价收费。
     
     
    4, 常见问题解答
      问:提供DNA测序样品时,提供何种形态比较好?
    答:我们推荐客户提供菌体,由我们来提取质粒,这样DNA样品比较稳定。或是您在提供质粒的同时提供菌体。如果单纯提供质粒,一定要注意样品的纯度和数量。提供的测序样品为PCR产物时,特别要注意DNA的纯度和数量。PCR产物必须进行切胶回收,否则无法得到良好的测序效果。

    问:提供的测序样品为菌体时,以什么形态提供最好?
    答:菌体的形态大致包括:平板培养菌、穿刺培养菌、甘油保存菌等。我们建议您提供穿刺培养菌。因为平板培养菌运送时容易碎裂;而甘油保存菌则容易污染,运送过程中容易溢出。制作穿刺菌时,可在1.5ml的Tube管中加入琼脂培养基,把菌体用牙签穿刺于琼脂培养基(固体)中,37度培养一个晚上后便可使用。穿刺培养菌在常温下可保存数月,且不容易污染,便于运送。

    问:在测序结果上,找不到测序用引物后面的序列,为什么?
    答:由于短片段DNA电泳后的信号较弱,一般在测序用引物后面几个至数十个(严重时40-50个)碱基会读不出来(或者读错)。请引起注意。

    问:PCR片段直接测序和PCR片段经克隆后测序的结果有何区别?
    答:众所周知,PCR扩增过程中会出现很多错配现象,但不可能所有的错配都发生在同一位置。PCR片段直接测序时,其结果是PCR片段众多分子的混合物的结果。如果在某一个点上出现了几十次错配现象,但大多数分子(或许是几十万个分子)在这个点上应该还是正确的,在测序时,错配现象也就反映不出来了。因此,PCR片段直接测序的结果反映的是PCR用模板最原始的结果。而PCR片段经克隆后测序是测定了某一个分子的DNA序列。在几十个循环的PCR扩增过程中,很难保证某一个分子的任何点都不发生错配。因此,PCR片段经克隆后的测序结果,往往存大着一些错配的序列,和PCR片段直接的结果相比有些碱基会有所不同。这种错配现象的多少取决于PCR扩增时使用的DNA聚合酶的保真性能。要减少PCR扩增过程中的错配现象,在PCR反应时,可选用保真性能高的DNA聚合酶。

    问:测序结果不到800 Base,还照常收费了,为什么?
    答:如在DNA样品中的DNA序列分布匀称,没有复杂结构时,正常的测序反应能保证达到800Base以上。但有一些 样品立体结构复杂,赞成聚合酶延伸反应终止。测序信号突然减弱或消失,或者测序结果出现套峰现象。出现这些现象的原因由 DNA模板本身所造成(公司保证进行2次以上的测序工作)。对这些结果,公司须照常收费,出现这些情况的原因分析如下:
    G、Crich 、G、C连续结构。这种情况一般表现为测序信号突然减弱或消失。
    A、T的连续结构。这种情况一般表现为A、T连续结构后面的测序结果出现套峰,根据文献记载,原因在于聚合酶进行聚合反应时,由于A或T的连续,结构以后序列的聚合反应(打滑现象),造成测序结果紊乱,出现套峰。
    一般在多少个A或T的后面能出现这种情况呢?现大还没有这方面的报道。根据我们的经验,这一情况的出现和A或T的连续结构后面的序列的排列情况有着直接的关系。有时10多个A或T的连续结构后面便出现套峰,但有时60-70个A或T的连续结构后面的序列也一样可以完整地读出来。具体情况还有待考证。
    一般来说,PCR片段直接测序时,A或T的连续结构后面的序列的测序结果都会出现套峰。原因在于测序时经历了PCR反应及测序反应(测序反应本身也是PCR反应)二次聚合酶的打滑的现象。
    原因不明的复杂结构,测序结果出现突然信号减弱或消失。从序列上看,DNA碱基排列并无特别异常。估计是DNA整体出现复杂结构,从某一个点开始聚合酶的聚合的反应便无法进行。

    问:测序结果有很多套峰,还照常收费。为什么?
    答-:DNA模板上出现二处以上的引物结合点,或者DNA模板上有严重的重复序列,以及测序引物不纯时,测序结果便会出现套峰现象,出现这种现象的原因由DNA模板本身或者引物本身造成,对这些结果(公司保证进行2次以上的测序工作)。公司须照常收费。

    问:怎样使用TaKaRa提供的测序报告?
    答-:在我们提供的测序报告中,有一份打印的或用邮件提供DNA碱基排列顺序的测序结果。这个结果是我们根据测序仪的自动分析,并经严格确认后打印的测序结果。但测序仪有时会发生误读或漏读现象,而我们的工作人员在检查时也没有发现。这时的打印结果或邮件提供会出现错误。只有测序的原始结果才是最原始的、最正确的,请客户拿到结果后,进行详细确认。如有不明白的地方,请立即和我们联系,我们会随时确认并进行解决。

    问:怎样选择(设计)测序引物?
    答-:测序用引物要求非常严格,不同于PCR产物。PCR用引物一般只要能和模板结合,3′端的几个碱基能完全配对,既使引物长达80-100多个碱基,只要调整PCR反应条件,也能成功进行PCR反应。而测序引物便不一样了,必须严格符合以下要求。本公司的测序用引物全用引物设计软件Oligo5.0设计。在本公司测序时,我们可免费帮助设计测序用引物。
    长度在15~25个碱基左右,一般选择20个碱基(根据GC含量作适当调整),3′端尽选择G或C碱基(但不绝对),以增加与模板的结合力。
    T温度应选择50℃~70℃左右。
    GC含量应选择在50%左右,尽量避开A、T、G、C的连续结构。
    避开引物自身形成发夹结构或引物二聚体结构等复杂结构。
    保证引物和模板100%配对,特别是3′端的几个碱基一定要100%配对。同时必须严格保证引物和模板只能有一个结合位点。

    问:测序结果和文献资料不一样,为什么?
    答-:原因有很多,如同一种动物,在不同的种族之间,或者不同的个体之间,基因序列也不一定完全一样。如果是PCR产物克隆测序,那还有PCR产物错配的因素等等。我们提供的测序结果是客户样品序列的忠实结果,不能保证是否和文献序列完全一致,请理解。

     
     
     
     
     
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